Цитокиновые реакции при дислипопротеинемиях у взрослых жителей Европейского Севера России в зависимости от индекса массы тела
DOI:
https://doi.org/10.37482/2687-1491-Z139Ключевые слова:
цитокины, цитокиновые реакции, воспаление, липидный профиль, дислипопротеинемии, ожирение, Европейский Север РоссииАннотация
Повышение содержания провоспалительных цитокинов в крови является стереотипной реакцией воспаления вне зависимости от этиологии и характера течения. Цитокины, обладая плейотропностью, обеспечивают межклеточные взаимодействия, стимулируют функциональную активность клеток, их пролиферацию и дифференцировку. Цель работы – сравнение частоты повышенных уровней цитокинов при дислипопротеинемиях у взрослых жителей Европейского Севера РФ с разной массой тела. Материалы и методы. Обследованы 313 жителей Архангельской области в возрасте 45–60 лет: с нормальной массой тела (211 человек; индекс массы тела до 30 кг/м2) и ожирением (102 человека; индекс массы тела 31–40 кг/м2). Показатели липидного профиля определяли ферментативным и турбидиметрическим методами на биохимическом автоматическом анализаторе, уровень цитокинов – методом твердофазного иммуноферментного анализа. Результаты. Повышенные концентрации в крови изучаемых цитокинов, совпадающие с дислипопротеинемией, у лиц с нормальной массой тела выявлены в 2–12 % случаев. При ожирении частота увеличенных концентраций цитокинов была выше в 2–7 раз; наиболее резкие различия получены относительно интерлейкина-6 (частота повышенных концентраций доходила до 44 %). Значительное увеличение концентрации интерлейкина-1ß в крови северян ассоциировано с ростом уровней липопротеинов низкой (ЛПНП) и очень низкой плотности (ЛПОНП), триглицеридов. Частота повышенного уровня TNF-α была наиболее значимой (36,28 % случаев) при аномально высоких концентрациях триглицеридов. Увеличенные концентрации интерлейкина-6 наиболее часто ассоциировались с ростом содержания в крови нескольких транспортных форм: ЛПНП, ЛПОНП, окисленных ЛПНП, а также триглицеридов. Содержание интерлейкина-10 более чем в 40 % случаев было повышенным в крови у северян с аномально большими уровнями ЛПНП и ЛПОНП. Итак, цитокиновая реакция у северян с ожирением более выражена, при этом она, независимо от массы тела, ассоциирована преимущественно с повышением
содержания в крови транспортных форм ЛПНП, ЛПОНП и окисленных ЛПНП.
Скачивания
Библиографические ссылки
Le G., Novotny S.A., Mader T.L., Greising S.M., Chan S.S.K., Kyba M., Lowe D.A., Warren G.L. A Moderate Oestradiol Level Enhances Neutrophil Number and Activity in Muscle After Traumatic Injury but Strength Recovery Is Accelerated // J. Physiol. 2018. Vol. 596, № 19. Р. 4665–4680. DOI: 10.1113/JP276432
Князева Л.И., Шишова А.С., Степченко М.А. Динамика показателей иммунного статуса и ригидности сосудистой стенки у больных артериальной гипертензией с ожирением // Фундам. исследования. 2012. № 7-2. С. 338–343.
Giannakopoulou C.E., Sotiriou A., Dettoraki M., Yang M., Perlikos F., Toumpanakis D., Prezerakos G., Koutsourelakis I., Kastis G.A., Vassilakopoulou V., Mizi E., Papalois A., Greer J.J., Vassilakopoulos T. Regulation of Breathing Pattern by IL-10 // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2019. Vol. 317, № 1. Р. R190–R202. DOI: 10.1152/ajpregu.00065.2019
Steensberg A., Febbraio M.A., Osada T., Schjerling P., Hall G., Saltin B., Pedersen B.K. Interleukin-6 Production in Contracting Human Skeletal Muscle Is Influenced by Pre-Exercise Glycogen Content // J. Physiol. 2001. Vol. 537, № 2. P. 633–639. DOI: 10.1111/j.1469-7793.2001.00633.x
Snodgrass R.G., Boß M., Zezina E., Weigert A., Dehne N., Fleming I., Brüne B., Namgaladze D. Hypoxia Potentiates Palmitate-Induced Pro-Inflammatory Activation of Primary Human Macrophages // J. Biol. Chem. 2016. Vol. 291, № 1. P. 413–424. DOI: 10.1074/jbc.M115.686709
Катинас Е.Б. Рябова М.А., Карпищенко С.А. Цитокиновый состав ларингеального секрета у больных рецидивирующим папилломатозом гортани при местной терапии интерфероном альфа-2 // Рос. иммунол. журн. 2008. Т. 2(11), № 2. С. 186–196.
Van Snick J. Interleukin-6: An Overview // Annu. Rev. Immunol. 1990. Vol. 8. P. 253–278. DOI: 10.1146/annurev.iy.08.040190.001345
Schwartz E.A., Zhang W.-Y., Karnik S.K., Borwege S., Anand V.R., Laine P.S., Su Y., Reaven P.D. Nutrient Modification of the Innate Immune Response: A Novel Mechanism by Which Saturated Fatty Acids Greatly Amplify Monocyte Inflammation // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2010. Vol. 30, № 4. P. 802–808. DOI: 10.1161/ATVBAHA.109.201681
Титов В.Н., Рожкова Т.А., Каминная В.И. Роль избыточного количества мясной пищи в патогенезе атеросклероза и атероматоза у животных и человека (обзор) // Журн. мед.-биол. исследований. 2018. Т. 6, № 2. С. 174–187. DOI: 10.17238/issn2542-1298.2018.6.2.174
Титов В.Н., Крылин В.В., Ширяева Ю.К. Профилактика атеросклероза. Избыток в пище пальмитиновой кислоты – причина гиперхолестеринемии, синдрома воспаления, резистентности миоцитов к инсулину и апоптоза // Клин. лаб. диагностика. 2011. № 2. С. 4–15.
Cury-Boaventura M.F., Gorjão R., Martins de Lima T., Fiamoncini J., Godoy A.B.P., Deschamphs F.C., Soriano F.G., Curi R. Effect of Medium/ω-6 Long Chain Triglyceride-Based Emulsion on Leucocyte Death and Inflammatory Gene Expression // Clin. Exp. Immunol. 2011. Vol. 165, № 3. Р. 383–392. DOI: 10.1111/j.1365-2249.2011.04432.x
Ставинская О.А., Балашова С.Н. Участие лептина в регуляции программируемой клеточной гибели у лиц с дислипидемией // Экология человека. 2015. № 12. C. 34–37.
Diaconu A., Coculescu B.I., Manole G., Vultur H., Coculescu E.C., Stocheci C.M., Tudorache I.S., Dincă A.L., Dincă V.G. Lipoprotein-Associated Phospholipase A2 (Lp-PLA2) – Possible Diagnostic and Risk Biomarker in Chronic Ischaemic Heart Disease // J. Enzyme Inhib. Med. Chem. 2021. Vol. 36, № 1. P. 68–73. DOI: 10.1080/14756366.2020.1839447
Nezos A., Skarlis C., Psarrou A., Markakis K., Garantziotis P., Papanikolaou A., Gravani F., Voulgarelis M., Tzioufas A.G., Koutsilieris M., Moutsopoulos H.M., Kotsifaki E., Mavragani C.P. Lipoprotein-Associated Phospholipase A2: A Novel Contributor in Sjögren’s Syndrome-Related Lymphoma? // Front. Immunol. 2021. Vol. 12. Art. № 683623. DOI: 10.3389/fimmu.2021.683623
Yazdi A.S., Ghoreschi K. The Interleukin-1 Family // Adv. Exp. Med. Biol. 2016. Vol. 941. P. 21–29. DOI: 10.1007/978-94-024-0921-5_2
Shin M.S., Kang Y., Lee N., Wahl E.R., Kim S.H., Kang K.S., Lazova R., Kang I. Self Double-Stranded (ds)DNA Induces IL-1β Production from Human Monocytes by Activating NLRP3 Inflammasome in the Presence of Anti-dsDNA Antibodies // J. Immunol. 2013. Vol. 190, № 4. Р. 1407–1415. DOI: 10.4049/jimmunol.1201195
Snodgrass R.G., Huang S., Namgaladze D., Jandali O., Shao T., Sama S., Brüne B., Hwang D.H. Docosahexaenoic Acid and Palmitic Acid Reciprocally Modulate Monocyte Activation in Part Through Endoplasmic Reticulum Stress // J. Nutr. Biochem. 2016. Vol. 32. P. 39–45. DOI: 10.1016/j.jnutbio.2016.01.010
Данилова Г.А. Механизмы действия интерлейкина-1β на центральную хеморецепцию // XXII съезд Физиологического общества им. И.П. Павлова: тез. докл. Волгоград: Изд-во ВолгГМУ, 2013. С. 142–143.
Liu J., Cao L., Feng Y., Li Y., Li T. MiR-338-3p Inhibits TNF-α-Induced Lipogenesis in Human Sebocytes // Biotechnol. Lett. 2017. Vol. 39, № 9. Р. 1343–1349. DOI: 10.1007/s10529-017-2369-3
Montier Y., Lorentz A., Krämer S., Sellge G., Schock M., Bauer M., Schuppan D., Bischoff S.C. Central Role of IL-6 and MMP-1 for Cross Talk Between Human Intestinal Mast Cells and Human Intestinal Fibroblasts // Immunobiology. 2012. Vol. 217, № 9. Р. 912–919. DOI: 10.1016/j.imbio.2012.01.003
Ridker P.M., MacFadyen J.G., Glynn R.J., Bradwin G., Hasan A.A., Rifai N. Comparison of Interleukin-6, C-Reactive Protein, and Low-Density Lipoprotein Cholesterol as Biomarkers of Residual Risk in Contemporary Practice: Secondary Analyses from the Cardiovascular Inflammation Reduction Trial // Eur. Heart J. 2020. Vol. 41, № 31. P. 2952–2961. DOI: 10.1093/eurheartj/ehaa160
Señarís R.M., Trujillo M.L., Navia B., Comes G., Ferrer B., Giralt M., Hidalgo J. Interleukin-6 Regulates the Expression of Hypothalamic Neuropeptides Involved in Body Weight in a Gender-Dependent Way // J. Neuroendocrinol. 2011. Vol. 23, № 8. Р. 675–686. DOI: 10.1111/j.1365-2826.2011.02158.x
Самодова А.В., Добродеева Л.К., Штаборов В.А., Пашинская К.О. Влияние реакций мозгового натрийуретического пептида, ирисина, эндотелина 1 на состояние иммунной системы, работающих на архипелаге Шпицберген, в зависимости от срока проживания // Вестн. Кольск. науч. центра РАН. 2018. Т. 10, № 3. С. 87–92.
Wedell-Neergaard A.S., Lang Lehrskov L., Christensen R.H., Legaard G.E., Dorph E., Larsen M.K., Launbo N., Fagerlind S.R., Seide S.K., Nymand S., Ball M., Vinum N., Dahl C.N., Henneberg M., Ried-Larsen M., Nybing J.D., Christensen R., Rosenmeier J.B., Karstoft K., Pedersen B.K., Ellingsgaard H., Krogh-Madsen R. Exercise-Induced Changes in Visceral Adipose Tissue Mass Are Regulated by IL-6 Signaling: A Randomized Controlled Trial // Cell Metab. 2019. Vol. 29, № 4. P. 844–855. DOI: 10.1016/j.cmet.2018.12.007
Wang X., Wong K., Ouyang W., Rutz S. Targeting IL-10 Family Cytokines for the Treatment of Human Diseases // Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2019. Vol. 11, № 2. Art. № a028548. DOI: 10.1101/cshperspect.a028548
Dhus O., Bunk S., von Aulock S., Hermann C. IL-10 Release Requires Stronger Toll-Like Receptor 4-Triggering Than TNF: A Possible Explanation for the Selective Effects of Heterozygous TLR4 Polymorphism Asp(299)Gly on IL-10 Release // Immunobiology. 2008. Vol. 213, № 8. P. 621–627. DOI: 10.1016/j.imbio.2008.03.001
References
Le G., Novotny S.A., Mader T.L., Greising S.M., Chan S.S.K., Kyba M., Lowe D.A., Warren G.L. A Moderate Oestradiol Level Enhances Neutrophil Number and Activity in Muscle After Traumatic Injury but Strength Recovery Is Accelerated. J. Physiol., 2018, vol. 596, no. 19, pp. 4665–4680. DOI: 10.1113/JP276432
Knyazeva L.I., Shishova A.S., Stepchenko M.A. Dinamika pokazateley immunnogo statusa i rigidnosti sosudistoy stenki u bol’nykh arterial’noy gipertenziey s ozhireniem [Dynamics of Indicators of the Immune Status and Rigidity of the Vascular Wall in Patients Suffering from Arterial Hypertension with Obesity]. Fundamental’nye issledovaniya, 2012, no. 7-2, pp. 338–343.
Giannakopoulou C.E., Sotiriou A., Dettoraki M., Yang M., Perlikos F., Toumpanakis D., Prezerakos G., Koutsourelakis I., Kastis G.A., Vassilakopoulou V., Mizi E., Papalois A., Greer J.J., Vassilakopoulos T. Regulation of Breathing Pattern by IL-10. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 2019, vol. 317, no. 1, pp. R190–R202. DOI: 10.1152/ajpregu.00065.2019
Steensberg A., Febbraio M.A., Osada T., Schjerling P., Hall G., Saltin B., Pedersen B.K. Interleukin-6 Production in Contracting Human Skeletal Muscle Is Influenced by Pre-Exercise Glycogen Content. J. Physiol., 2001, vol. 537, no. 2, pp. 633–639. DOI: 10.1111/j.1469-7793.2001.00633.x
Snodgrass R.G., Boß M., Zezina E., Weigert A., Dehne N., Fleming I., Brüne B., Namgaladze D. Hypoxia Potentiates Palmitate-Induced Pro-Inflammatory Activation of Primary Human Macrophages. J. Biol. Chem., 2016, vol. 291, no. 1, pp. 413–424. DOI: 10.1074/jbc.M115.686709
Katinas E.B. Ryabova M.A., Karpishchenko S.A. Tsitokinovyy sostav laringeal’nogo sekreta u bol’nykh retsidiviruyushchim papillomatozom gortani pri mestnoy terapii interferonom al’fa-2 [Cytokine Composition of Laryngeal Secretion in Patients with Recurrent Laryngeal Papillomatosis at Local Therapy with Interferon Alfa-2]. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal, 2008, vol. 2, no. 2, pp. 186–196.
Van Snick J. Interleukin-6: An Overview. Annu. Rev. Immunol., 1990, vol. 8, pp. 253–278. DOI: 10.1146/annurev.iy.08.040190.001345
Schwartz E.A., Zhang W.-Y., Karnik S.K., Borwege S., Anand V.R., Laine P.S., Su Y., Reaven P.D. Nutrient Modification of the Innate Immune Response: A Novel Mechanism by Which Saturated Fatty Acids Greatly Amplify Monocyte Inflammation. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2010, vol. 30, no. 4, pp. 802–808. DOI: 10.1161/ATVBAHA.109.201681
Titov V.N., Rozhkova T.A., Kaminnaya V.I. The Role of Excessive Meat Intake in the Pathogenesis of Atherosclerosis and Atheromatosis in Humans and Animals (Review). J. Med. Biol. Res., 2018, vol. 6, no. 2, pp. 174–187. DOI: 10.17238/issn2542-1298.2018.6.2.174
Titov V.N., Krylin V.V., Shiryaeva Yu.K. Profilaktika ateroskleroza. Izbytok v pishche pal’mitinovoy kisloty – prichina giperkholesterinemii, sindroma vospaleniya, rezistentnosti miotsitov k insulinu i apoptoza [Prevention of Atherosclerosis. Excess Palmitic Acid in Food Is a Cause of Hypercholesterolemia, Inflammatory Syndrome, Insulin Resistance in Myocytes, and Apoptosis]. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika, 2011, no. 2, pp. 4–15.
Cury-Boaventura M.F., Gorjão R., Martins de Lima T., Fiamoncini J., Godoy A.B.P., Deschamphs F.C., Soriano F.G., Curi R. Effect of Medium/ω-6 Long Chain Triglyceride-Based Emulsion on Leucocyte Death and Inflammatory Gene Expression. Clin. Exp. Immunol., 2011, vol. 165, no. 3, pp. 383–392. DOI: 10.1111/j.1365-2249.2011.04432.x
Stavinskaya O.A., Balashova S.N. Uchastie leptina v regulyatsii programmiruemoy kletochnoy gibeli u lits s dislipidemiey [The Involvement of Leptin in the Regulation of Programmed Cell Death in Persons with Dyslipidemia]. Ekologiya cheloveka, 2015, no. 12, pp. 34–37.
Diaconu A., Coculescu B.I., Manole G., Vultur H., Coculescu E.C., Stocheci C.M., Tudorache I.S., Dincă A.L., Dincă V.G. Lipoprotein-Associated Phospholipase A2 (Lp-PLA2) – Possible Diagnostic and Risk Biomarker in Chronic Ischaemic Heart Disease. J. Enzyme Inhib. Med. Chem., 2021, vol. 36, no. 1, pp. 68–73. DOI: 10.1080/14756366.2020.1839447
Nezos A., Skarlis C., Psarrou A., Markakis K., Garantziotis P., Papanikolaou A., Gravani F., Voulgarelis M., Tzioufas A.G., Koutsilieris M., Moutsopoulos H.M., Kotsifaki E., Mavragani C.P. Lipoprotein-Associated Phospholipase A2: A Novel Contributor in Sjögren’s Syndrome-Related Lymphoma? Front. Immunol., 2021, vol. 12. Art. no. 683623. DOI: 10.3389/fimmu.2021.683623
Yazdi A.S., Ghoreschi K. The Interleukin-1 Family. Adv. Exp. Med. Biol., 2016, vol. 941, pp. 21–29. DOI: 10.1007/978-94-024-0921-5_2
Shin M.S., Kang Y., Lee N., Wahl E.R., Kim S.H., Kang K.S., Lazova R., Kang I. Self Double-Stranded (ds) DNA Induces IL-1β Production from Human Monocytes by Activating NLRP3 Inflammasome in the Presence of AntidsDNA Antibodies. J. Immunol., 2013, vol. 190, no. 4, pp. 1407–1415. DOI: 10.4049/jimmunol.1201195
Snodgrass R.G., Huang S., Namgaladze D., Jandali O., Shao T., Sama S., Brüne B., Hwang D.H. Docosahexaenoic Acid and Palmitic Acid Reciprocally Modulate Monocyte Activation in Part Through Endoplasmic Reticulum Stress. J. Nutr. Biochem., 2016, vol. 32, pp. 39–45. DOI: 10.1016/j.jnutbio.2016.01.010
Danilova G.A. Mekhanizmy deystviya interleykina-1β na tsentral’nuyu khemoretseptsiyu [Mechanisms of Interleukin-1β Action on Central Chemoreception]. XXII s”ezd Fiziologicheskogo obshchestva im. I.P. Pavlova [The 22nd Congress of I.P. Pavlov Physiological Society]. Volgograd, 2013, pp. 142–143.
Liu J., Cao L., Feng Y., Li Y., Li T. MiR-338-3p Inhibits TNF-α-Induced Lipogenesis in Human Sebocytes. Biotechnol. Lett., 2017, vol. 39, no. 9, pp. 1343–1349. DOI: 10.1007/s10529-017-2369-3
Montier Y., Lorentz A., Krämer S., Sellge G., Schock M., Bauer M., Schuppan D., Bischoff S.C. Central Role of IL-6 and MMP-1 for Cross Talk Between Human Intestinal Mast Cells and Human Intestinal Fibroblasts. Immunobiology, 2012, vol. 217, no. 9, pp. 912–919. DOI: 10.1016/j.imbio.2012.01.003
Ridker P.M., MacFadyen J.G., Glynn R.J., Bradwin G., Hasan A.A., Rifai N. Comparison of Interleukin-6, C-Reactive Protein, and Low-Density Lipoprotein Cholesterol as Biomarkers of Residual Risk in Contemporary Practice: Secondary Analyses from the Cardiovascular Inflammation Reduction Trial. Eur. Heart J., 2020, vol. 41, no. 31, pp. 2952–2961. DOI: 10.1093/eurheartj/ehaa160
Señarís R.M., Trujillo M.L., Navia B., Comes G., Ferrer B., Giralt M., Hidalgo J. Interleukin-6 Regulates the Expression of Hypothalamic Neuropeptides Involved in Body Weight in a Gender-Dependent Way. J. Neuroendocrinol., 2011, vol. 23, no. 8, pp. 675–686. DOI: 10.1111/j.1365-2826.2011.02158.x
Samodova A.V., Dobrodeeva L.K., Shtaborov V.A., Pashinskaya K.O. Vliyanie reaktsiy mozgovogo natriyureticheskogo peptida, irisina, endotelina 1 na sostoyanie immunnoy sistemy, rabotayushchikh na arkhipelage Shpitsbergen, v zavisimosti ot sroka prozhivaniya [Influence of Brain Natriuretic Peptide, Irisin and Endothelin-1 Reactions on the Immune System in Persons Working in the Svalbard Archipelago Depending on Duration of Stay]. Vestnik Kol’skogo nauchogo tsentra RAN, 2018, vol. 10, no. 3, pp. 87–92.
Wedell-Neergaard A.S., Lang Lehrskov L., Christensen R.H., Legaard G.E., Dorph E., Larsen M.K., Launbo N., Fagerlind S.R., Seide S.K., Nymand S., Ball M., Vinum N., Dahl C.N., Henneberg M., Ried-Larsen M., Nybing J.D., Christensen R., Rosenmeier J.B., Karstoft K., Pedersen B.K., Ellingsgaard H., Krogh-Madsen R. Exercise-Induced Changes in Visceral Adipose Tissue Mass Are Regulated by IL-6 Signaling: A Randomized Controlled Trial. Cell Metab., 2019, vol. 29, no. 4, pp. 844–855. DOI: 10.1016/j.cmet.2018.12.007
Wang X., Wong K., Ouyang W., Rutz S. Targeting IL-10 Family Cytokines for the Treatment of Human Diseases. Cold Spring Harb. Perspect. Biol., 2019, vol. 11, no. 2. Art. no. a028548. DOI: 10.1101/cshperspect.a028548
Dhus O., Bunk S., von Aulock S., Hermann C. IL-10 Release Requires Stronger Toll-Like Receptor 4-Triggering Than TNF: A Possible Explanation for the Selective Effects of Heterozygous TLR4 Polymorphism Asp(299)Gly on IL-10 Release. Immunobiology, 2008, vol. 213, no. 8, pp. 621–627. DOI: 10.1016/j.imbio.2008.03.001
