Влияние сукцинатсодержащего препарата на лейкоцитарный состав крови крыс в покое и при плавании с грузом в тесте «до отказа»
DOI:
https://doi.org/10.37482/2687-1491-Z056Ключевые слова:
крысы, лейкоциты, физическая нагрузка, сукцинатсодержащий препарат, перераспределение клеточного состава кровиАннотация
Исследовали динамику клеточного состава белой крови крыс-самцов Wistar в состоянии покоя и при плавании с грузом до и после использования сукцинатсодержащего препарата (Suc, мезо-2,3- димеркаптоянтарная кислота). Были выделены две контрольные группы животных, содержащихся в стандартных условиях вивария: получавшие («ВивК+Suc») и не получавшие («ВивК») препарат Suc за 12 ч до обследования. Аналогичным образом были сформированы две группы животных, плавающих в тесте «до отказа» с грузом (4 % от массы тела): получавшие препарат за 12 ч до нагрузки («Плав4%+Suc») и не получавшие его («Плав4%»). Определены однонаправленные сдвиги, характеризующие морфофункциональное состояние белой крови крыс в условиях эксперимента. У животных группы «ВивК+Suc» по сравнению с «ВивК» отмечено увеличение количества лейкоцитов за счет роста числа эозинофилов и моноцитов, больших лимфоцитов и микролимфоцитов при относительном снижении числа малых лимфоцитов и неизменном уровне гранулоцитов с тенденцией к уменьшению количества палочкоядерных нейтрофилов. В группе «Плав4%+Suc» по сравнению с «Плав4%» изменение количества лейкоцитов и их субпопуляционного состава проявилось аналогично перераспределению иммуноцитов, отмеченному у животных контрольных групп. Повышение лимфоцито-нейтрофильного отношения у крыс группы «Плав4%+Suc» как показателя стрессоустойчивости животных соответствовало увеличению времени плавания в 2,8 раза. Отличия в клеточном составе крови у животных группы «ВивК+Suc» от данных группы «ВивК» рассматриваются как влияние Suc на подготовку организма к реализации защитной функции при физической нагрузке, поскольку характер перераспределения лейкоцитарного состава крови в группе «ВивК+Suc» имеет значительное сходство по показателям с животными в группе «Плав4%+Suc». Практическое значение выполненного исследования связано с поиском новых биологически активных веществ, оптимально воздействующих на иммунитет животных в условиях повышенной нагрузки. Новые данные о механизме перераспределения крови животных, реализующемся в условиях действия Suc до плавательной нагрузки, могут быть использованы при исследовании закономерностей проявления срочного адаптационного эффекта.
Для цитирования: Рубцова Л.Ю., Монгалёв Н.П., Вахнина Н.А., Шадрина В.Д., Чупахин О.Н., Бойко Е.Р. Влияние сукцинатсодержащего препарата на лейкоцитарный состав крови крыс в покое и при плавании с грузом в тесте «до отказа» // Журн. мед.-биол. исследований. 2021. Т. 9, № 2. С. 182–191. DOI: 10.37482/2687-1491-Z056
Скачивания
Библиографические ссылки
Пономарева Т.И., Добряков Ю.И. Защитный эффект экстрактов из асцидий при стрессорном воздействии // Актуал. проблемы гуманит. и естеств. наук. 2013. № 1. С. 330–334.
Титов В.Н., Лисицын Д.М., Разумовский С.Д. Методические вопросы и диагностическое значение определения перекисного окисления липидов в липопротеинах низкой плотности. Олеиновая жирная кислота как биологический антиоксидант (обзор литературы) // Клин. лаб. диагностика. 2005. № 4. С. 3–10.
Сахно Л.В., Шевела Е.Я., Черных Е.Р. Фенотипические и функциональные особенности альтернативно активированных макрофагов: возможное использование в регенеративной медицине // Иммунология. 2015. Т. 36, № 4. С. 242–246.
Dhabhar F.S., Malarkey W.B., Neri E., McEwen B.S. Stress-Induced Redistribution of Immune Cells – from Barracks to Boulevards to Battlefields: A Tale of Three Hormones – Curt Richter Award Winner // Psychoneuroendocrinology. 2012. Vol. 37, № 9. P. 1345–1368. DOI: 10.1016/j.psyneuen.2012.05.008
Добродеева Л.К., Самодова А.В., Карякина О.Е. Взаимосвязи в системе иммунитета. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2014. 198 с.
Dammanаhalli K.J., Sun Z. Endothelins and NADPH Oxidases in the Cardiovascular System // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2008. Vol. 35, № 1. P. 2–6. DOI: 10.1111/j.1440-1681.2007.04830.x
Гулый М.Ф. Основные метаболические циклы. Киев: Наукова думка, 1968. 417 с.
Шабиев Л.Ф., Гарипов Т.В., Гасанов А.С. Влияние препаратов «Янтарная кислота», «Янтарос» и «Янтарос плюс» на морфологический состав крови норок // Уч. зап. Казан. гос. акад. ветеринар. медицины им. Н.Э. Баумана. 2012. Т. 209. С. 349–352.
Яковлева Е.Г., Анисько Р.В., Горшков Г.И. Янтарная кислота – природный адаптоген и иммуностимулятор // Вестн. Курск. гос. с.-х. акад. 2015. № 7. С. 164–167.
Коваленко А.Л., Белякова Н.В. Янтарная кислота: фармакологическая активность и лекарственные формы // Фармация. 2000. № 5. С. 40–43.
Папуниди К.Х., Кадиков И.Р., Ситдиков Ф.Ф., Гайзатуллин Р.Р., Симонова Н.Н. Эффективность применения биологически активных кормовых добавок в рационе молодняка норок // Ветеринария Кубани. 2014. № 3. С. 22–24.
Oswald S., Grube M., Siegmund W., Kroemer H.K. Transporter-Mediated Uptake into Cellular Compartments // Xenobiotica. 2007. Vol. 37, № 10-11. P. 1171–1195. DOI: 10.1080/00498250701570251
Mills E., O’Neill L.A.J. Succinate: A Metabolic Signal in Inflammation // Trends Cell Biol. 2014. Vol. 24, № 5. P. 313–320. DOI: 10.1016/j.tcb.2013.11.008
O’Neill L.A.J., Pearce E.J. Immunometabolism Governs Dendritic Cell and Macrophage Function // J. Exp. Med. 2016. Vol. 213, № 1. P. 15–23. DOI: 10.1084/jem.20151570
Оковитый С.В., Радько С.В. Применение сукцинатов в спорте // Вопр. курортологии, физиотерапии и лечеб. физ. культуры. 2015. Т. 92, № 6. С. 59–65.
Кондрашова М.Н., Маевский Е.И. Взаимодействие гормональной и митохондриальной регуляции // Регуляция энергетического обмена и физиологическое состояние организма / под ред. М.Н. Кондрашовой. М.: Наука, 1978. С. 217–229.
Тестов Б.В. Преимущества и недостатки большого запаса энергии в организме животных // Фундам. исследования. 2007. № 8. С. 91–95.
Goutianos G., Tzioura A., Kyparos A., Paschalis V., Margaritelis N.V., Veskoukis A.S., Zafeiridis A., Dipla K., Nikolaidis M.G., Vrabas I.S. The Rat Adequately Reflects Human Responses to Exercise in Blood Biochemical Profile: A Comparative Study // Physiol. Rep. 2015. Vol. 3, № 2. Art. № e12293. DOI: 10.14814/phy2.12293
Gonzalez N.C., Kuwahira I. Systemic Oxygen Transport with Rest, Exercise, and Hypoxia: A Comparison of Humans, Rats, and Mice // Compr. Physiol. 2018. Vol. 8, № 4. Р. 1537–1573. DOI: 10.1002/cphy.c170051
Никитин В.Н. Гематологический атлас сельскохозяйственных и лабораторных животных. М.: Гос. изд-во с.-х. лит., 1956. 260 с.
Natale V.M., Brenner I.K., Moldoveanu A.I., Vasiliou P., Shek P., Shephard R.J. Effects of Three Different Types of Exercise on Blood Leukocyte Count During and Following Exercise // Sao Paulo Med. J. 2003. Vol. 121, № 1. P. 9–14. DOI: 10.1590/s1516-31802003000100003
Brito A.F., Silva A.S., Souza I.L.L., Pereira J.C., Martins I.R.R., Silva B.A. Intensity of Swimming Exercise Influences Tracheal Reactivity in Rats // J. Smooth Muscle Res. 2015. Vol. 51. P. 70–81. DOI: 10.1540/jsmr.51.70
Тодоров Й. Клинические лабораторные исследования в педиатрии. София: Медицина, 1968. 1065 с.
Физиологические, биохимические и биометрические показатели нормы экспериментальных животных: справ. / под ред. В.Г. Макарова, М.Н. Макаровой. СПб.: ЛЕМА, 2013. 116 с.
Кельцев В.А., Гребенкина Л.И., Яхина Ю.А., Антонова Ю.Ю. Морфофункциональное состояние иммунной системы при ревматических заболеваниях у детей из крупного промышленного центра // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2009. Т. 11, № 1-5. С. 872–876.
Рубцова Л.Ю., Монгалёв Н.П., Шадрина В.Д., Черных А.А., Вахнина Н.А., Макарова И.А., Романова А.М., Алисултанова Н.Ж., Василенко Т.Ф., Бойко Е.Р. Клеточный состав белой крови крыс при физической нагрузке разной интенсивности // Журн. мед.-биол. исследований. 2019. Т. 7, № 1. С. 23–31. DOI: 10.17238/issn2542-1298.2019.7.1.23
Колобовникова Ю.В., Уразова О.И., Новицкий В.В., Литвинова Л.С., Чумакова С.П. Эозинофил: современный взгляд на кинетику, структуру и функцию // Гематология и трансфузиология. 2012. Т. 57, № 1. С. 30–36.
Uotila L.M., Jahan F., Soto Hinoiosa L., Melandri E., Grönholm M., Gahmberg C.G. Specific Phosphorylations Transmit Signals from Leukocyte β2 to β1 Integrins and Regulate Adhesion // J. Biol. Chem. 2014. Vol. 289, № 46. Р. 32230–32242. DOI: 10.1074/jbc.M114.588111
Aten R.F., Kolodecik T.R., Rossi M.J., Debusscher C., Behrman H.R. Prostaglandin F2α Treatment in vivo, but not in vitro, Stimulates Protein Kinase C-Activated Superoxide Production by Nonsteroidogenic Cells of the Rat Corpus Luteum // Biol. Reprod. 1998. Vol. 59, № 5. P. 1069–1076. DOI: 10.1095/biolreprod59.5.1069
